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        人血清中福氏2a及宋內志賀菌O-特異性多糖抗體IgG含量間接ELISA定量檢測方法的驗證及應用

        發(fā)布時(shí)間:2025-06-08 05:22:16   來(lái)源:心得體會(huì )    點(diǎn)擊:   
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        李紅,石剛,郭麗娜,陳瓊,付宏斌,王國東,胡小華,朱衛華,王斌,葉強

        1.中國食品藥品檢定研究院衛生部生物技術(shù)產(chǎn)品檢定方法及其標準化重點(diǎn)實(shí)驗室,北京 102629;
        2.北京智飛綠竹生物制藥有限公司,北京 100176

        志賀菌屬(Shigella)是引發(fā)細菌性痢疾的主要致病菌[1],可分為4 個(gè)血清群(serotype),包括A 群痢疾志賀菌、B 群福氏志賀菌、C 群鮑氏志賀菌和D 群宋內志賀菌[2-6]。福氏志賀菌在發(fā)展中國家呈地方性流行,也是全球最常見(jiàn)的分離株,包括2a、3a、5b等16個(gè)亞型[3],其中2a型是我國流行的主要型別[7]。在美國和其他高度工業(yè)化國家,宋內志賀菌是優(yōu)勢菌株[8-9]。我國痢疾發(fā)病率較高[7,10-12],尤其在出現抗生素耐藥株后,其發(fā)病率位居39種傳染病前5位[13-16]。

        痢疾疫苗的研究和使用可追溯至1903 年,但目前仍無(wú)理想的痢疾疫苗上市[17-18]。O-特異性多糖鏈(O-specific polysaccharide chain)簡(jiǎn)稱(chēng)O抗原,是志賀菌重要的保護性抗原之一,目前研究較多的是用生化方法提取O 抗原后與蛋白載體結合,制成多糖-蛋白結合疫苗[19-20],接種人體后可產(chǎn)生特異性IgG,對志賀菌引起的疾病具有保護作用。檢測人血清中IgG抗體的含量是評價(jià)該疫苗免疫應答水平的重要手段。本研究按照間接ELISA 法的建立及驗證要求,對企業(yè)提供方法的準確性、精密性及特異性等方面進(jìn)行驗證[21-22],并進(jìn)行初步應用。

        1.1 多糖及血清 福氏2a 及宋內志賀菌O-特異性多糖(分別簡(jiǎn)稱(chēng)福氏2a 多糖及宋內多糖)、參考血清(血清08,賦值為100 EU/mL)、質(zhì)控血清(血清96)及福氏宋內痢疾雙價(jià)疫苗免疫前后1 842 份人血清樣本均由北京智飛綠竹生物制藥有限公司提供。

        1.2 主要試劑 堿性磷酸酶標記羊抗人IgG(貨號:A3187)及磷酸-4-硝基苯酯二鈉鹽(4-Nitrophenyl phosphatedisodium salthexahydratepNPPdisodium salthexahydrate,PNPP)(貨號:P4744)均購自美國Sigma-aldrich公司;
        牛血清白蛋白購自德國默克公司;
        PBST 購自北京萬(wàn)泰生物藥業(yè)有限公司。

        1.3 檢測方法 將福氏2a及宋內多糖分別按10 μg/mL濃度包被96 孔板,100 μL/孔,4 ℃包被過(guò)夜;
        洗液(含0.05%吐溫的生理鹽水)洗滌2 次,用含4%牛血清白蛋白的PBST 于37 ℃封閉1 ~2 h;
        加入待測血清(1∶10稀釋?zhuān)?00 μL/孔,37 ℃作用2 h;
        洗液洗滌3次,加入堿性磷酸酶標記羊抗人IgG(1∶40 000 稀釋?zhuān)?00 μL/孔,37 ℃孵育2 h;
        洗液洗滌3 次,加入PNPP 溶液,100 μL/孔,37 ℃孵育2 h;
        用3 mol/L氫氧化鈉終止反應,用酶標儀檢測A405及A690。采用四參數法繪制參考血清的標準曲線(xiàn),計算每份血清福氏2a和宋內多糖抗體IgG含量。

        1.4 方法的驗證

        1.4.1 準確性 將參考血清及質(zhì)控血清按一定比例混合(見(jiàn)表1),制備成10 份不同濃度的血清樣本,編號為S1 ~S10,按1.3 項方法連續檢測6 d,并按下式計算抗體回收率。

        表1 參考血清與質(zhì)控血清的混合比例(%)Tab.1 Mixing ratio of reference serum and quality control serum(%)

        1.4.2 精密性

        1.4.2.1 試驗內精密性 將1.4.1 項中制備的血清樣本S10 及QC 按1.3 項方法連續檢測6 d,每天重復檢測3次,計算每天每份樣本3次檢測結果的CV。

        1.4.2.2 試驗間精密性 將1.4.1 項中制備的S1 ~S10 血清樣本及質(zhì)控血清(編號為QC)按1.3 項方法連續檢測6 d,計算每份樣本6 次檢測結果的變異系數(coefficient of variation,CV)。

        1.4.3 特異性 將福氏2a 及宋內多糖分別稀釋至400 μg/mL,等體積分數混合后,再與參考血清(1∶100 稀釋?zhuān)┌吹润w積分數混合,置37 ℃孵育2 h,以該血清作為陰性血清。將福氏2a和宋內多糖分別稀釋至200、100、40、10、4、1、0.4、0.2、0.1、0.04、0.02、0.01、0.005、0.001、0.000 1、0 μg/mL,分別與參考血清及陰性血清(均1∶100 稀釋?zhuān)┌吹润w積分數混合,將混合血清置37 ℃孵育2 h,酶標儀檢測A405,并按下式計算抑制率。以多糖濃度的對數值為橫坐標,抑制率為縱坐標,繪制抑制曲線(xiàn)。

        1.4.4 線(xiàn)性范圍 按1.3 項方法檢測參考血清,以抗體含量為橫坐標,A405為縱坐標,繪制標準曲線(xiàn),獲得曲線(xiàn)方程,計算相關(guān)系數(R2)。

        1.4.5 定量限(limit of quantitation,LOQ) 將1.4.1項中制備的S1 ~S10 血清樣本按1.3 項方法連續檢測6 d,計算多糖抗體IgG 回收率及其CV,回收率計算公式同1.4.1 項。以回收率CV低于20%的相應參考血清含量作為方法的LOQ。

        1.5 方法的應用 采用驗證的方法檢測福氏宋內痢疾雙價(jià)疫苗免疫前后的1 842份血清樣本。

        1.6 數據整理與分析 應用SoftmaxPro 5.4.1軟件進(jìn)行整理數據及作圖。

        2.1 方法的驗證

        2.1.1 準確性 10 份血清樣本中福氏2a 多糖抗體IgG含量為97.10~109.82EU/mL,回收率為73.21%~222.68%,除S1外均在60%~140%范圍內;
        宋內多糖抗體IgG 含量為32.07 ~62.17 EU/mL,回收率為83.67%~123.56%,均在60%~140%范圍內。見(jiàn)表2。表明該方法具有良好的準確性。

        表2 準確性驗證結果(n=6)Tab.2 Verification for accuracy(n=6)

        2.1.2 精密性

        2.1.2.1 試驗內精密性 連續6 d,每天3次檢測10份血清樣本,福氏2a多糖抗體IgG含量的CV為0.06%~9.92%,宋內多糖抗體IgG 含 量 的CV為0.63% ~3.91%,均<30%,見(jiàn)表3。表明該方法具有良好的試驗內精密性。

        表3 試驗內精密性驗證結果(n=3)Tab.3 Verification for precision within tests(n=3)

        2.1.2.2 試驗間精密性 連續6 d 檢測10 份血清樣本福氏2a多糖抗體IgG含量的CV為3.09%~9.10%,宋內多糖抗體IgG 含量的CV為3.85% ~11.88%,均<30%,見(jiàn)表4。表明該方法具有良好的試驗間精密性。

        表4 試驗間精密性驗證結果(n=6)Tab.4 Verification for precision between tests(n=6)

        2.1.3 特異性 隨著(zhù)吸收多糖濃度的增高,參考血清的抑制率增加,陰性血清增加不明顯。福氏2a多糖吸收濃度達100 μg/mL時(shí),參考血清抑制率達85.95%,陰性血清抑制率為2.89%;
        福氏2a多糖吸收濃度為5×10-5μg/mL時(shí),參考血清抑制率達-0.61%,陰性血清抑制率為14.97%。宋內多糖吸收濃度達100 μg/mL時(shí),參考血清抑制率達88.42%,陰性血清抑制率為1.65%;
        宋內多糖吸收濃度達5 × 10-5μg/mL 時(shí),參考血清抑制率達1.04%,陰性血清抑制率為6.71%。見(jiàn)圖1。表明兩種多糖與血清可發(fā)生特異性反應。

        圖1 多糖抗原對血清抗體的抑制曲線(xiàn)Fig.1 Inhibition curve of polysaccharide antigen on serum antibody

        2.1.4 線(xiàn)性范圍 兩種多糖抗體IgG含量間接ELISA檢測標準曲線(xiàn)見(jiàn)圖2。福氏2a 多糖抗體IgG 含量在0.05 ~0.125 EU/mL 范圍內,與A405呈良好的線(xiàn)性關(guān)系,線(xiàn)性方程為Y=(-0.032 3-9.97)/[1+(X/0.501)0.822]+9.97,R2≥0.99;
        宋內多糖抗體IgG含量在0.025 ~0.125 EU/mL 范圍內,與A405呈良好的線(xiàn)性關(guān)系,線(xiàn)性方程為Y=(-0.005 51-4.79)/[1+(X/0.078 2)0.978]+4.79,R2≥0.99。

        圖2 血清多糖抗體含量間接ELISA檢測標準曲線(xiàn)Fig.2 Standard curve of indirect ELISA for detection of serum polysaccharide antibody content

        2.1.5 LOQ 福氏2a和宋內多糖抗體IgG檢測的LOQ分別為0.05和0.025 EU/mL。見(jiàn)表5。

        表5 福氏2a及宋內多糖抗體IgG含量檢測IOQ的確定(%)Tab.5 LOQ for detection of IgG content of flexneri 2a and sonnei polysaccharide antibody(%)

        2.2 方法的應用 福氏宋內痢疾雙價(jià)疫苗免疫前血清樣本中,福氏2a多糖抗體IgG含量為0.18~0.48EU/nL,宋內多糖抗體IgG 含量為0.08~0.43 EU/mL;
        免疫后血清樣本中福氏2a多糖抗體IgG 含量為2.59~17.03 EU/mL,宋內多糖抗體IgG 含量為5.38~16.64 EU/mL。免疫后血清中抗體IgG 含量大幅高于免疫前。

        目前,評估痢疾疫苗臨床效果的主要檢測手段為ELISA 法檢測血清中的抗體滴度,該方法由北京智飛綠竹生物制藥有限公司建立,于中國食品藥品檢定研究院細菌多糖和結合疫苗室進(jìn)行了準確性、精密性和特異性等方面驗證。定量限驗證結果顯示,S1 ~S10 血清樣本中S1、S2、S3 及S7 的福氏2a 多糖抗體IgG 回收率CV均>20%,以S2 為例,6 次測定的平均回收率為73.21%,但回收率CV為96.56%,表明此時(shí)無(wú)法穩定檢測出S2 血清內參考血清的抗體IgG含量,即該濃度抗體無(wú)法準確定量;
        當回收率CV較低時(shí),該血清內所含參考血清的抗體才可準確定量[7]。因此,以回收率CV低于20%的參考血清抗體含量作為該方法的定量限,福氏2a 和宋內多糖抗體IgG 檢測的定量限分別為0.05 和0.025 EU/mL。在福氏2a 的回收率均值中,S7 的回收率CV大于20%,初步分析應為偶然誤差,今后將通過(guò)增加檢測次數來(lái)驗證該結果的準確性。

        準確性驗證結果顯示,福氏2a 和宋內多糖血清IgG 回收率分別為90.58% ~132.43%和83.67% ~106.13%,表明方法準確性較高;
        精密性驗證結果顯示,試驗間CV分別為3.09% ~9.10%和3.85% ~11.88%,試驗內CV分別為0.06%~9.92%和0.63%~3.91%,表明方法具有良好的精密性;
        特異性驗證結果顯示,在競爭抑制ELISA 中,隨著(zhù)多糖吸收濃度的增高,參考血清對福氏2a多糖的抑制率從-0.61%升至85.95%,對宋內多糖的抑制率從1.04% 升至88.42%,表明兩種多糖與血清可發(fā)生特異性反應。綜上所述,該方法可滿(mǎn)足痢疾疫苗臨床血清抗體定量檢測的要求。

        目前,國內外的痢疾疫苗臨床血清免疫原性檢測中,仍以半定量法為主,即用血清抗體水平滴度表示[23-25],無(wú)法準確檢測出血清的抗體水平,急需建立定量檢測方法,才能更準確描述機體的免疫水平和免疫狀態(tài)。本研究檢測中所用的參考血清抗體值仍采用賦值的方式,對于定量檢測方法仍是一個(gè)缺陷,但國際尚無(wú)已定值的參考血清,需采用其他方法來(lái)進(jìn)行參考血清抗體值的首次定量,這也是今后的研究需要解決的問(wèn)題。

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