熊瑩槐,羅曉春,錢(qián)雪橋,黃錦爐,劉緒博
(1. 廣東海大集團股份有限公司畜牧水產(chǎn)研究中心,農業(yè)農村部微生態(tài)資源養殖利用重點(diǎn)實(shí)驗室,廣東 廣州 511400;
2. 華南理工大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,廣東 廣州 510006)
凡納濱對蝦(Litopenaeusvannamei)又稱(chēng)南美白對蝦,具有適溫范圍廣(6~39 ℃),鹽度適應能力強(0.5~50),生長(cháng)速度快,抗病力強,肉質(zhì)鮮美等特點(diǎn),已成為中國和世界范圍內的對蝦三大養殖種類(lèi)之一[1]。
在過(guò)去幾十年間,隨著(zhù)水產(chǎn)養殖業(yè)的快速發(fā)展,全球魚(yú)粉供應量開(kāi)始出現短缺,魚(yú)粉價(jià)格昂貴,因此在水生生物飼料中用植物蛋白替代魚(yú)粉開(kāi)始被廣泛研究[2-3]。但是相對于動(dòng)物蛋白,植物蛋白源存在諸多抗營(yíng)養因子,諸如植酸鹽、大豆抗原蛋白等,這會(huì )導致蝦類(lèi)消化酶活性下降,甚至導致養殖動(dòng)物腸道組織結構產(chǎn)生病理性的損傷[4-6]。據報道,通過(guò)飼料添加復合酶制劑是提高水產(chǎn)動(dòng)物對飼料消化吸收能力的一個(gè)有效的途徑之一,甚至在一定程度上可以提高水生動(dòng)物的免疫能力[7-8]。例如,Yildirim等[9]報道飼料中添加復合酶制劑(果膠酶、木聚糖酶等)可顯著(zhù)提高非洲鯰(Oreochromisniloticus×O.aureus)的飼料轉化率和生長(cháng)性能;
王國霞等[4]報道飼料添加植酸酶和復合酶可以提高黃顙魚(yú)(Pelteobagrusfulvidraco)抗氧化能力和腸道健康狀況。
此外,隨著(zhù)全球市場(chǎng)對蝦類(lèi)的需求越來(lái)越大,蝦養殖業(yè)迅猛發(fā)展[10],為提高蝦養殖業(yè)的經(jīng)濟社會(huì )利益,高密度養殖模式開(kāi)始在整個(gè)蝦產(chǎn)業(yè)中流行[11-12],這使蝦持續暴露在人工和次優(yōu)的養殖條件下。在高密度養殖模式下,往往投入過(guò)多的餌料,從而導致殘餌糞便在蝦池的大量積累,使得對蝦對飼料利用率下降,且水環(huán)境急劇惡化,有害微生物大量繁殖,進(jìn)一步影響了對蝦的生長(cháng)、發(fā)育和產(chǎn)品質(zhì)量[13]。飼料添加益生菌可以在一定程度上緩解養殖弊端,益生菌在腸道中的繁殖速度大于凋亡速度,并與宿主、環(huán)境形成動(dòng)態(tài)平衡[14]。研究表明,益生菌可以在一定范圍內形成占位效應,從而抑制致病菌過(guò)度生長(cháng),有助于調節腸道菌群的平衡,并可以提高宿主的免疫力;
此外,益生菌還可以為宿主提供養分,增強宿主消化酶活性,提高飼料消化率[15]。目前,較少研究報道飼料中添加微生態(tài)制劑對凡納濱對蝦體生化組成、能量收支和能量平衡的影響。
本實(shí)驗通過(guò)在飼料中添加復合酶制劑,復合菌制劑以及復合菌酶制劑來(lái)對比研究復合酶制劑和復合菌制劑對凡納濱對蝦生長(cháng)、體生化組成、和能量平衡的影響,以期為凡納濱對蝦健康養殖提供理論依據。
本實(shí)驗于廣州海鷗島試驗基地進(jìn)行,所用系統為循環(huán)水系統。以初始體重(2.05±0.05)g凡納濱對蝦(Litopenaeusvannamei)為實(shí)驗對象,分別設計了1個(gè)對照組和3個(gè)處理組,其中,A為對照組,投喂基礎飼料(主要成分見(jiàn)表1);
B為基礎飼料+酶制劑(消化酶和非淀粉多糖酶等復合酶);
C為基礎飼料+復合菌制劑組(復合菌由嗜酸乳桿菌、枯草芽孢桿菌、釀酒酵母和糞鏈球菌構成);
D為基礎飼料+復合菌酶制劑(主要由嗜酸乳桿菌、枯草芽孢桿菌、釀酒酵母和糞鏈球菌復合菌與消化酶和非淀粉多糖酶等復合酶)。飼料制劑購于歐科拜克生物有限公司(洛陽(yáng),河南,中國)。菌酶制劑通過(guò)攪拌的方法與飼料均勻混合,B組酶制劑濃度為150 mg/kg,C組復合菌濃度為2×109cfu/g,D組菌、酶濃度分別為2×109cfu/g、150 mg/kg;
飼料中添加的菌、酶劑量均為25 g/kg。每個(gè)處理組分別設4個(gè)重復,每個(gè)重復分別放養100尾蝦。
表1 基礎飼料的主要成分Table 1 composition of the basic feed
實(shí)驗開(kāi)始前,將對蝦暫養于鹽度17的半咸水中進(jìn)行馴化,整個(gè)馴化期為10 d。期間保持合適充氧,定時(shí)測定水溫,定時(shí)投喂適量基礎飼料,并且將養殖用水的鹽度每天提升2,逐漸馴化直到鹽度升至養殖用水的自然鹽度31。馴化暫養結束后穩定2 d,準備進(jìn)行正式實(shí)驗。
暫養馴化階段結束后,將實(shí)驗蝦饑餓1 d,然后選取規格相近,無(wú)病無(wú)傷、健康活潑的凡納濱對蝦分輪次隨機放入16個(gè)相同規格的400 L塑料桶中,每次放入對蝦10尾,共放10輪即每個(gè)養殖桶中共放凡納濱對蝦100尾,在放蝦過(guò)程中稱(chēng)量并記錄每個(gè)重復中蝦的總重量。然后進(jìn)行45 d的養殖實(shí)驗。養殖過(guò)程中,使水溫保持27 ℃左右,溶氧高于5 mg/L,養殖用水鹽度31,酸堿度8.0±0.1。養殖水質(zhì)使用多功能YSI專(zhuān)業(yè)水質(zhì)分析儀進(jìn)行測定(Yellow Spring Instrument Co., Yellow Spring, Ohio, USA)。每天于上午8:30及下午5:00定時(shí)投喂,每天的投喂量以對蝦體重3%~5%為準。每次投喂前分別收集養殖桶底部的殘餌、糞便,同時(shí)換水1/3~2/3。每天檢查并記錄對蝦的攝食和死亡情況。
1.2.1 糞便收集與肌肉采集
實(shí)驗用飼料隨機取樣3份,用于飼料成分的分析。實(shí)驗開(kāi)始前對投喂時(shí)間內飼料的1.5 h溶失率進(jìn)行測定,用于校正溶失造成的攝食量計算中的誤差。殘餌在投喂后1 h用虹吸法及時(shí)收集,每次在投喂前和投喂后1.5 h用虹吸法收集糞便和蝦殼,再分別裝入對應燒杯,在70 ℃下烘干至恒重后在-20 ℃下保存。實(shí)驗結束時(shí),對蝦停食24 h,然后對每個(gè)桶的蝦分別稱(chēng)重,樣品在70 ℃下烘干至恒重后在-20 ℃下保存。
肌肉組織經(jīng)液氮迅速冷凍后于-80 ℃超低溫冰箱保存,用于肌肉組織腺苷酸的測定。
1.2.2 生長(cháng)指標的計算
養殖實(shí)驗開(kāi)始前,測量記錄實(shí)驗用蝦的初總體重、初均重、初均長(cháng)、對蝦的總數。45 d的養殖之后,將實(shí)驗用蝦進(jìn)行24 h的饑餓處理,統計存活的數量,計算均增重、增重率、特定生長(cháng)率等。
體重增長(cháng)率=[均增重(g)/初均重(g)]×100%;
(1)
成活率=養殖結束后對蝦總數/養殖開(kāi)始前對蝦總數×100%
(2)
特定生長(cháng)率=(lnW2-lnW1)/t×100%;
(3)
W1表示初始體重,W2表示末體重,t表示養殖時(shí)間。
1.2.3 生化組成和能值的測定
將實(shí)驗蝦樣品放入烘箱70 ℃下烘干至恒重,得到干物質(zhì)含量;
以馬福爐(HRMF-7000,熱博特有限公司,中國)550 ℃灼燒6 h灰化至恒重得到灰分含量;
元素分析儀(Vario ELⅢ,元素分析系統公司,德國)測得N含量后,再計算得到蛋白質(zhì)含量(6.25×N);
以脂肪抽提儀(BUCHI36680,力辰儀器有限公司,中國)測定蝦體脂肪含量(乙醚為抽提劑);
蝦體組織能值以氧彈熱量?jì)x(PARR6400,Parr儀器公司,美國)測得。
對蝦的攝食(C)、生長(cháng)(G)、呼吸(R)、糞便(F)、排泄(U)和蛻殼(E)的能量符合下列關(guān)系:
C=G+R+F+U+E
(4)
其中,C為攝入的餌料能量,G為生長(cháng)能,R為代謝能,F為糞能,U為排泄能,E為蛻殼能。其中,C、G、F和E所含的能值用PARR 6400型氧彈熱量?jì)x測定,排泄能以下式計算:
U=(CN-GN-FN-EN)×24.83
(5)
式中,CN為攝食食物中所含的氮,GN為蝦體中積累的氮,FN和EN為糞便和蛻殼損失的氮,24.83為每克氨氮的能值(KJ)。這里假定氨是唯一的氮排泄物。含氮量用VarioELⅢ型元素分析儀測定。呼吸耗能由能量收支式R=C-G-F-U-E求出。
1.2.4 腺苷酸含量的測定
腺苷酸含量采用Agilent 1100高效液相色譜儀(HPLC,Agilent Corp., USA)進(jìn)行測定。適量冷凍肌肉組織樣品加入9倍體積的冰冷高氯酸(0.9 mol·L-1)溶液進(jìn)行勻漿。勻漿液于7 000 g、4 ℃下離心5 min,收集上清液并以3.75 mol·L-1K2CO3中和至pH6.5。中和后的溶液于7 000 g、4 ℃下離心10 min,收集上清液用于測定相應組織中腺苷酸含量。組織樣品經(jīng)0.45 μm微孔濾膜過(guò)濾后用于測定腺苷三磷酸(ATP)、腺苷二磷酸(ADP)和腺苷一磷酸(AMP)含量。以UltimateTM AQ-C18柱(4.6×250 mm),柱溫為35 ℃,洗脫時(shí)間為24 min,流速為1.0 ml·min-1,檢測波長(cháng)為254 nm。以磷酸緩沖液(40 mmol·L-1KH2PO4和60 mmol·L-1K2HPO4,pH6.50)作為流動(dòng)相。根據測得的峰面積和標準曲線(xiàn)計算腺苷酸含量(微摩爾每克組織,μmol·gww-1)。標準曲線(xiàn)由已知濃度的ATP(0-0.8 mmol·L-1)、ADP(0-1.2 mmol·L-1)和AMP(0-1.5 mmol·L-1)溶液制作而成[16]?;貧w曲線(xiàn)方程、總腺苷酸(TAN)含量計算公式如下:
ATP Y=14.045x+9.374,R2=1.000
(6)
ADP Y=18.11x-25.053,R2=0.9998
(7)
AMP Y=18.32x-31.33,R2=0.9998
(8)
TAN=[ATP]+[ADP]+[AMP]
(9)
上式中,Y表示腺苷酸峰面積,X表示腺苷酸濃度,[ATP]、[ADP]和[AMP]分別表示ATP、ADP和AMP濃度。
數據使用平均值±標準誤(Mean±S.E.)表示。利用SPSS 22.0對凡納濱對蝦以上各指標的變化作單因子方差分析(One-Way ANOVA)和Duncan’s多重比較檢驗,并以P<0.05作為差異顯著(zhù)水平。
由表2所示,養殖實(shí)驗結果表明,飼料酶制劑和菌制劑均可以顯著(zhù)提高凡納濱對蝦的生長(cháng)性能。投喂不同飼料45 d后,實(shí)驗組(B、C、D組)凡納濱對蝦的末體重、均增重、增重率和特定生長(cháng)率均顯著(zhù)高于對照組(A組),且D組生長(cháng)指標顯著(zhù)高于其他組(P<0.05)。C組對蝦的末體重、均增重和增重率顯著(zhù)高于B組,但顯著(zhù)低于D組(P<0.05)。
表2 不同處理凡納濱對蝦生長(cháng)情況Table 2 Growth performance of Litopenaeus vannamei fed with different diets
如表3所示,飼料酶制劑和菌制劑對凡納濱對蝦體脂肪和灰分影響不顯著(zhù)(P>0.05)。D組對蝦體蛋白質(zhì)含量顯著(zhù)高于A(yíng)、B兩組,且D組對蝦體水分含量顯著(zhù)低于A(yíng)、B和C組(P<0.05)。B組和C組對蝦體水分和蛋白質(zhì)差異不顯著(zhù)(P>0.05)。飼料添加復合菌制劑可以顯著(zhù)提高對蝦體能量值,其中C組和D組對蝦體能量顯著(zhù)高于A(yíng)和B組(P<0.05)。
表3 不同處理凡納濱對蝦體成分組成和體能量Table 3 Body composition and energy content of Litopenaeus vannamei fed with different diets
由表4和表5可知,飼料添加酶制劑和菌制劑可以顯著(zhù)提高凡納濱對蝦的攝食能,生長(cháng)能,呼吸能和蛻殼能,其中D組各能值含量最高(P<0.05)。相比于對照組(A組),B組對蝦生長(cháng)能占攝食能比例、蛻殼能占攝食能比例顯著(zhù)升高,且呼吸能占攝食能比例顯著(zhù)降低(P<0.05)。同樣地,C組對蝦生長(cháng)能占攝食能比例、蛻殼能占攝食能比例也顯著(zhù)升高;
呼吸能占攝食能比例和排泄能占攝食能比例均顯著(zhù)降低,且B、C兩組間也存在顯著(zhù)性差異(P<0.05)。D組對蝦生長(cháng)能占攝食能比例、蛻殼能占攝食能比例顯著(zhù)高于其他三組,且呼吸能占攝食能比例和排泄能占攝食能比例顯著(zhù)低于其他三組(P<0.05)。
表4 不同處理凡納濱對蝦能量收支各組分能量值Table 4 Energy budget components of Litopenaeus vannamei fed with different diets
表5 不同處理凡納濱對蝦能量收支各組分能量分配Table 5 The ratio of the energy of each component to the energy of ingestion of Litopenaeus vannamei fed with different diets
由圖1可知,不同處理對凡納濱對蝦肌肉的TAN無(wú)顯著(zhù)影響(圖1a);
飼料酶制劑(B組)和菌制劑(C組)顯著(zhù)提高了凡納濱對蝦肌肉ATP含量,且酶菌制劑(D組)肌肉ATP含量顯著(zhù)高于其他三組(P<0.05,圖1b)。同時(shí),飼料酶制劑組(B組)、菌制劑組(C組)和菌酶制劑組(D組)凡納濱對蝦肌肉AMP/ATP和ADP/ATP值顯著(zhù)低于對照組,且C組顯著(zhù)低于B組,D組顯著(zhù)低于其他三組(P<0.05,圖1c,d)。
圖1 不同處理凡納濱對蝦肌肉的腺苷酸含量注:ATP為腺苷三磷酸,ADP為腺苷二磷酸,AMP為腺苷一磷酸,TAN為三者之和。不同字母上標表示單因素分析Duncan’s檢驗差異性顯著(zhù),下同。Fig.1 Adenine nucleotides in the muscles of Litopenaeus vannamei fed with different dietsNotes:ATP is adenosine triphosphate, ADP is adenosine diphosphate, AMP is adenosine monophosphate, TAN is the sum of the ATP, ADP and AMP. Means with different superscripts indicate significant differences (P<0.05) based on e-way ANOVA and the Duncan’s test.
通過(guò)添加酶制劑和菌制劑提高水產(chǎn)動(dòng)物的生產(chǎn)性能已有大量成功的報道[13,15,17-18]。相似地,本實(shí)驗也發(fā)現飼料中添加復合酶制劑(消化酶和非淀粉多糖酶)和復合菌制劑(嗜酸乳桿菌、枯草芽孢桿菌、釀酒酵母和糞鏈球菌)可顯著(zhù)提高凡納濱對蝦的生長(cháng)性能。這可能因為,飼料中添加的消化酶增強了凡納濱對蝦對飼料的利用率,加大了營(yíng)養物質(zhì)的吸收,從而提高了生長(cháng)性能。此外,酶制劑中的非淀粉多糖酶可降解可溶性非淀粉多糖,減少食糜粘性,也可以摧毀植物細胞壁,進(jìn)一步釋放飼料的營(yíng)養成分[19]而被對蝦所吸收利用。飼料中所添加的復合菌制劑本身可以作為營(yíng)養物質(zhì)被對蝦利用,更可以改善腸道菌群結構,促進(jìn)腸道成熟,增強腸道對營(yíng)養物質(zhì)的吸收能力[20-21]。其中,枯草芽孢桿菌自身可以合成α-淀粉酶、脂肪酶、纖維素酶、蛋白酶等,在消化道中與動(dòng)物體內的消化酶類(lèi)一同發(fā)揮作用[22]。此外,本實(shí)驗表明,飼料中同時(shí)添加酶制劑和菌制劑效果比分別單獨添加酶制劑或菌制劑效果好,表明凡納濱飼料中復合酶和復合菌制劑可以起到協(xié)同作用。
本實(shí)驗研究結果表明,飼料中復合菌酶制劑的添加會(huì )顯著(zhù)降低凡納濱對蝦體水分含量,并顯著(zhù)提高體蛋白質(zhì)含量,從而提高凡納濱對蝦的品質(zhì)。飼料中菌酶制劑的添加顯著(zhù)提高了凡納濱對蝦的攝食能,且菌酶制劑組凡納濱對蝦的(生長(cháng)能/攝食能)和(蛻殼能/攝食能)顯著(zhù)高于其他組,而(呼吸能/攝食能)和(排泄能/攝食能)顯著(zhù)低于其他組,表明菌酶制劑組凡納濱對蝦更多的能量被用來(lái)生長(cháng)和蛻殼。此外,相較于對照組,在飼料中單獨添加酶制劑或菌制劑也可以顯著(zhù)提高凡納濱對蝦用于生長(cháng)的能量,但該效果均不如菌酶制劑組好。
在生物體內,ATP是能量的儲存形式,而ADP和AMP是能量被利用的形式,當機體的能量被大量?jì)Υ鏁r(shí),生物體可以獲得更好的生長(cháng)性能[23]。本研究發(fā)現單獨在飼料中添加復合酶制劑和復合菌制劑均可以顯著(zhù)提高凡納濱對蝦肌肉ATP含量,并降低ADP/ATP和AMP/ATP含量,表明酶制劑和菌制劑的添加可以促進(jìn)對蝦能量的保存率,從而提高其生長(cháng)效率。此外,本實(shí)驗進(jìn)一步發(fā)現,在飼料中同時(shí)添加復合酶制劑和復合菌制劑效果比單獨添加這兩種制劑更好。這進(jìn)一步解釋了菌酶制劑組凡納濱對蝦具有最佳生長(cháng)性能。
本實(shí)驗發(fā)現在飼料中添加復合酶制劑,復合菌制劑可以顯著(zhù)提高凡納濱對蝦能量收支狀況和肌肉ATP含量,從而顯著(zhù)提高了凡納濱對蝦的生長(cháng)性能。同時(shí)本研究結果表明,凡納濱對蝦飼料中酶制劑和菌制劑起到協(xié)同作用,同時(shí)添加效果最好。
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